多种成分均可以从细胞中提取总蛋白,如Triton、SDS、NP-40等。NP-40裂解液 (NP-40 Lysis Buffer)是采用一种温和的裂解方法获得总蛋白的裂解液。所获得的蛋白质可以用于PAGE电泳、Western、免疫沉淀(Immunol Precipitation,IP)和免疫共沉淀(co-IP)等,并含有多种蛋白酶抑制剂成分,可有效抑制蛋白的降解,并维持原有的蛋白间相互作用。
NP-40 Lysis Buffer主要由Tris-HCl、NaCl、NP-40以及sodium pyropho
-sphate,β-glycerophosphate,sodium fluoride, EDTA等多种蛋白酶抑制剂组成。用NP-40 Lysis Buffer得到的蛋白,可以用BCA蛋白定量试剂盒和Bradford蛋白定量试剂盒测定蛋白浓度。
操作步骤(仅供参考):
(一)贴壁培养细胞
取NP-40 Lysis Buffer 置于室温溶解混匀,加入PMSF,使PMSF终浓度为1mM。
去除贴壁细胞的培养液,用PBS、NS或无血清培养液清洗1次,低速离心,弃上清,留取沉淀。
按照6孔板每孔加入150~250μl含有PMSF的裂解液的比例,加入NP-40 Lysis Buffer 。移液器轻轻吹打,使裂解液和细胞充分接触。置于冰上或4℃裂解15~30min,通常裂解液作用于细胞1~3s内,细胞就会被裂解。
10000~12000g,4℃离心5~10min(如无低温离心机,室温下离心亦可),取上清。
进行后续的SDS-PAGE、Western、免疫沉淀和免疫共沉淀等操作。
(二)悬浮培养细胞
取NP-40 Lysis Buffer 置于室温溶解混匀,加入PMSF,使PMSF终浓度为1mM。低速离心悬浮细胞,弃上清,收集沉淀。
用手指轻弹细胞,使其松散。按照6孔板每孔细胞加入150~200μl含有PMSF的裂解液的比例,加入NP-40 Lysis Buffer 。通常6孔板每孔细胞加入150μl裂解液已经足够,但如果细胞密度非常高可以适当加大裂解液的用量到200~250μl。再用手指轻弹以充分裂解细胞,充分裂解后应没有明显的细胞沉淀。
10000~12000g,4℃离心5~10min(如无低温离心机,室温下离心亦可),取上清。
进行后续的SDS-PAGE、Western、免疫沉淀和免疫共沉淀等操作。
(三)组织样本
取NP-40 Lysis Buffer 置于室温溶解混匀,加入PMSF,使PMSF终浓度为1mM。把组织剪切成细小的碎片,越小越好。
取在液氮或超低温冰箱中冷冻30min以上的组织,迅速用液氮研磨,研磨过程尽量控制在1~2min之内,以减少蛋白的降解。
按照每20mg组织加入150~250μl裂解液的比例加入含有PMSF的裂解液。冰上或4℃裂解30~60min。
步骤3、4亦可以采用如下过程:按照每20mg组织加入150~250μl裂解液的比例,加入含有PMSF的NP-40 Lysis Buffer。用玻璃匀浆器或组织研磨器匀浆,直至充分裂解,该过程尽量控制在1~2min之内,以减少蛋白的降解。
10000~12000g,4℃离心5~15min(如无低温离心机,室温下离心亦可),取上清。
进行后续的PAGE、Western、免疫沉淀和免疫共沉淀等操作。
注意事项:
在贴壁培养细胞的操作步骤中,去除贴壁细胞的培养液后,如果血清中的蛋白没有干扰,可以不用清洗。
如果裂解不充分可以适当增加裂解液的用量,如果需要高浓度的蛋白样品,可以适当减少裂解液的用量。
在培养细胞的裂解中,如果细胞量较多,必需分装成50~100万细胞/离心管,然后再裂解。大团的细胞较难裂解充分,而少量的细胞由于裂解液容易和细胞充分接触,相对比较容易裂解充分。
如果组织样品本身非常细小,可以适当剪切后直接加入裂解液裂解,通过强烈Vortex使样品裂解充分。然后同样离心取上清,用于后续实验。直接裂解的优点是比较方便,不必使用匀浆器,缺点是不如使用匀浆器那样裂解得比较充分。
溶解 NP-40 Lysis Buffer时,应尽量缩短溶解时间,避免裂解液中的有效成分失效。
细胞裂解的操作步骤,应置于冰上或4℃进行。
为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。
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