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  • 人易位关联膜蛋白1(TRAM1)ELISA试剂盒

  • Human TRAM1 ELISA KIT

    Human / 人

    6个月

    仅供科研使用

    0.08ng/mL

    0.157 ~ 10ng/mL

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人易位关联膜蛋白1(TRAM1)ELISA试剂盒

产品仅供教研使用，用于定量检测细胞培养上清、血清、血浆中 人TRAM1。

简介

易位关联膜蛋白1，也被称为TRAM1，由TRAM1基因编码，它通过促进在SEC61通道的正确链定位，参与新生蛋白质链进入或通过内质网 (ER) 膜的易位，在易位到ER期间调节新生分泌蛋白链对胞质溶胶的暴露，可能影响SEC61通道侧门附近的磷脂双层，从而促进ER 蛋白转运，在整个整合到ER膜的过程中，与新生膜蛋白的跨膜 (TM) 结构域密切相关，与ER膜中G蛋白偶联受体视蛋白/OPSD新生链的第二个TM结构域相关，这可能有助于其整合到膜中，它在内质网应激条件下，通过选择性地将错误折叠的内质网膜蛋白从内质网逆转录转移到它们所在的细胞质中，参与在未折叠蛋白反应 (UPR) 过程中错误折叠的内质网膜蛋白的处置，这是一种综合应激反应 (ISR) 途径被蛋白酶体泛素化和降解。
检测原理

本试剂盒采用双抗体夹心法ELISA技术:将捕获抗体包被于酶标板上，捕获样品及标准品中的待测物TRAM1，清洗后，再加入生物素标记的检测抗体进行孵育后清洗，形成“捕获抗体-抗原-检测抗体”免疫复合物，随后加入链霉亲和素偶联的辣根过氧化物酶进行孵育，待孵育结束后清洗，接着加入TMB显色后，若样本中有待测物则显蓝色，加入终止液停止反应。检测过程中游离的成分均被洗去，用酶标仪在450 nm处测OD值，颜色的深浅和样品中的待测物的含量呈正比，通过绘制标准曲线计算出样本中TRAM1的浓度。

操作要点及注意事项
1. 混合蛋白质溶液时，应始终避免起泡。为了避免交叉污染，在添加每个标准品、样品和试剂时应更换移液器枪头。此外，每种试剂应单独使用容器。
2. 确保试剂不间断地添加到板孔中。为了确保准确的结果，在孵育步骤中需要粘合好封板膜。
3. 当使用自动洗板机时，在加入洗涤缓冲液后加入30秒的浸泡期，或者在洗涤步骤之间将板旋转180度，可以提高测定精度。
显色剂应保持无色，直到添加到板中。确保显色剂不受光线照射。显色剂应从无色变为蓝色。
4. 应按照与显色剂相同的顺序将终止液添加到板中。加入终止液后，孔中形成的颜色将从蓝色变为黄色。绿色的孔表示终止液未与基质溶液充分混合。
5. 此试剂盒提供的终止液为稀硫酸溶液，具有一定腐蚀性，应谨慎操作。
6. 该试剂盒中的某些成分含有防腐剂，可能会引起皮肤过敏反应，应佩带口罩避免吸入薄雾。
7. 显色剂B可能会引起皮肤、眼睛和呼吸道刺激，应佩带口罩避免吸入薄雾。

8. 佩戴防护手套、防护服、眼睛和面部防护用品。处理后彻底洗手。

试剂准备工作
使用前将所有试剂置于室温平衡30分钟左右。洗涤液/稀释液配置：如果洗涤液/稀释液（20×）有晶体析出，需在37℃下加热⾄晶体全部溶解。用蒸馏水1:20稀释（例如：1mL 浓缩洗涤液加入19mL的蒸馏水）
标准品配置：试剂盒中取出标准品，准备7个试管，先从200ng/mL标准品（200μL）按需吸取一定量用1×稀释液稀释至10ng/mL（例：50μL的标准品母液+950μL的1×稀释液，制备得到1000μL的10ng/mL浓度标准品），随后在6个试管中分别加入500μL的1×稀释液，在这6个单独的试管中将10ng/mL标准品依次2倍倍比稀释至6个梯度，共配制7个浓度的标准品，依次为： 10ng/mL、5ng/mL、2.5ng/mL、1.25ng/mL、0.625ng/mL、0.313ng/mL、0.157ng/mL，从最高浓度标准品溶液中吸取500μL标准品到下一个试管中，轻轻吹打混匀，以此类推进行标准品的倍比稀释（如图所示），1×稀释液用作零浓度标准品(0ng/mL)。




抗体工作液配置 : 使用前10分钟，将100×生物素化抗体于1000×g离心1分钟，随后用1×稀释液将100×生物素化抗体稀释成1×生物素化抗体工作液，根据所需用量当日配置当日使用。

酶结合物工作液配置 : 使用前10分钟，将100×SA-HRP溶液于1000×g离心1分钟，随后用1×稀释液将100×SA-HRP稀释成1×SA-HRP工作液，根据所需用量配置。

备 注：如待测样本中TRAM1浓度高于标准品最高值，请根据实际情况选择适当的稀释倍数。

结果的计算
计算标准品和样本复孔的平均OD值并减去空白孔的OD值作为校正值。以浓度为横坐标，OD值为纵坐标，在坐标纸上绘出四参数逻辑函数的标准曲线(作图时去掉空白组的值)。或者使用能够生成四参数逻辑（4-P）曲线拟合的计算机软件来创建标准曲线。
若样品OD值高于标准曲线上限，应适当稀释后重测并在计算样本浓度时乘以相应的稀释倍数。
示例数据

以下数据和曲线仅供参考，实验者需根据自己的实验数据建立标准曲线。

标准品浓度(ng/mL)

10

5

2.5

1.25

0.625

0.313

0.157

0

OD值

2.529

1.721

1.034

0.756

0.503

0.3

0.152

0.067

校正OD值

2.462

1.654

0.967

0.689

0.436

0.233

0.085

0


本图所示标准曲线仅供示例，结果计算应以同次试验标准品所绘标准曲线为准计算样本结果。

实验步骤

所有标准品、样品建议复孔检测
1. 酶标板准备：确定试验所需要的孔数，取下未使用的酶标条放回装有干燥剂的铝箔袋。
2. 样本孵育：每孔分别加入100μL不同浓度的标准品以及预处理过的待测样品（建议样本用通用稀释液最少稀释1倍上样，目的是减少基质效应），盖上封板胶纸，37℃避光反应1 h。孵育结束后，每孔加入300μL 1×洗涤缓冲液，轻轻晃动30秒，甩干并在纸上拍干，以这种方式清洗3次。
3. 抗体孵育：每孔加入100μL生物素化抗体工作液，轻轻混匀，盖上封板胶纸，37℃避光反应1h。孵育结束后，重复步骤2中的清洗方式清洗4次。
4. 酶标孵育：每孔加入100μL 1×SA-HRP工作液，盖上封板胶纸，37℃避光反应30分钟，清洗4次，拍干。
5. 底物显色：每孔首先加入50μL显色液A，随后加入50μL显色液B，轻轻混匀，盖上封板胶纸，37℃避光反应15分钟。

6. 终止反应：待显色反应结束后，每孔加入50μL终止液，轻轻混匀，5分钟内用预热完成的酶标仪在450nm处测吸光值。

回收率

回收率在不同基质的整个测定范围内选取在健康 人血清、血浆和细胞培养上清中加入3个不同浓度水平计算回收率。

线性关系
分别在选取的4份健康 人血清、血浆和细胞培养上清中加入高浓度TRAM1，在标准曲线动力学范围内进行稀释，评估线性。

注意事项
本公司 人ELISA试剂盒检测范围、灵敏度等实验数据，因检测样本的不同会有所调整，实际数据以随货说明书为准。

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