 
				产品仅供教研使用,用于定量检测细胞培养上清、血清、血浆中 大鼠αCTx。
简介
α-骨胶原交联(αCTx)是一种用于检测骨吸收的生物标志物,主要通过酶联免疫吸附试验(ELISA)方法进行检测。其检测原理是利用双抗体夹心法,通过抗aCTx单克隆抗体与样本中的aCTx结合,形成复合物,再通过酶标抗体检测其浓度,aCTx是Ⅰ型胶原降解产物的一部分,具有较高的特异性和稳定性,常用于骨质疏松症及其他骨病的诊断和治疗效果监测。
	本试剂盒采用双抗体夹心法ELISA技术:将捕获抗体包被于酶标板上,捕获样品及标准品中的待测物αCTx,清洗后,再加入生物素标记的检测抗体进行孵育后清洗,形成“捕获抗体-抗原-检测抗体”免疫复合物,随后加入链霉亲和素偶联的辣根过氧化物酶进行孵育,待孵育结束后清洗,接着加入TMB显色后,若样本中有待测物则显蓝色,加入终止液停止反应。检测过程中游离的成分均被洗去,用酶标仪在450 nm处测OD值,颜色的深浅和样品中的待测物的含量呈正比,通过绘制标准曲线计算出样本中αCTx的浓度。
 
	8. 佩戴防护手套、防护服、眼睛和面部防护用品。处理后彻底洗手。
 
		
 
	

	
抗体工作液配置 : 使用前10分钟,将100×生物素化抗体于1000×g离心1分钟,随后用1×稀释液将100×生物素化抗体稀释成1×生物素化抗体工作液,根据所需用量当日配置当日使用。
酶结合物工作液配置 : 使用前10分钟,将100×SA-HRP溶液于1000×g离心1分钟,随后用1×稀释液将100×SA-HRP稀释成1×SA-HRP工作液,根据所需用量配置。
备 注:如待测样本中αCTx浓度高于标准品最高值,请根据实际情况选择适当的稀释倍数。
	以下数据和曲线仅供参考,实验者需根据自己的实验数据建立标准曲线。
 
| 标准品浓度(pg/mL) | 9000 | 4500 | 2250 | 1125 | 562.5 | 281.25 | 140.63 | 0 | 
| OD值 | 2.518 | 1.673 | 0.966 | 0.713 | 0.37 | 0.229 | 0.193 | 0.067 | 
| 校正OD值 | 2.451 | 1.606 | 0.899 | 0.646 | 0.303 | 0.162 | 0.126 | 0 | 
	
本图所示标准曲线仅供示例,结果计算应以同次试验标准品所绘标准曲线为准计算样本结果。 
实验步骤
	6. 终止反应:待显色反应结束后,每孔加入50μL终止液,轻轻混匀,5分钟内用预热完成的酶标仪在450nm处测吸光值。
 
回收率
回收率在不同基质的整个测定范围内选取在健康 大鼠血清、血浆和细胞培养上清中加入3个不同浓度水平计算回收率。
	 
  
	线性关系
分别在选取的4份健康 大鼠血清、血浆和细胞培养上清中加入高浓度αCTx,在标准曲线动力学范围内进行稀释,评估线性。
 
 
	注意事项
本公司 大鼠ELISA试剂盒检测范围、灵敏度等实验数据,因检测样本的不同会有所调整,实际数据以随货说明书为准。 
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