固定的目的在于保存细胞和组织的原有形态结构,固定剂能阻止内源性溶酶体酶对自身组织和细胞的自溶、抑制细菌和霉菌的生长。固定剂通过凝固、生成添加化合物等使蛋白质内部结构发生改变,从而使酶失活。固定剂对细胞核细胞外成分发生物理改变。固定液主要分为醛类固定液、汞类固定液、醇类固定液、氧化剂类固定液、苦味酸盐类固定液等,较为常用的是醛类中的福尔马林、醇类中的乙醇。戊二醛固定液会引起蛋白质α-螺旋结构变形,不利于过氧化物酶染色,固定速度快,渗透力差。
戊二醛固定液(4%,电镜专用)由戊二醛、磷酸盐、去离子水等组成,pH7.2~7.4,该固定液对细胞核、细胞浆的细微结构固定效果好,经常用于电镜标本的固定。
操作步骤:
1、根据实验具体要求操作。
2、取新鲜标本,立即入戊二醛固定液4℃固定1~4h,稍大标本应适当延长固定时间。
3、送检或4℃保存。
注意事项:
戊二醛固定液有一定腐蚀性,请在通风较好的环境下小心操作, 避免吸入。
组织取材的厚度不同,固定时间也不同。常规活检组织比较适合的厚度为2~4mm,一般不超过6mm。对组织恰当的选材有利于固定液的渗透。
温度对固定的影响很明显,提高温度可以加速固定作用,但本固定液最好不要提高温度。
取出新鲜组织后,应及时固定。无法及时固定时,应保存于生理盐水中及时送检。
为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。
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